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信帆生物:如何有效完成CRISPR實(shí)驗(yàn)!

更新時(shí)間:2016-01-15      瀏覽次數(shù):1516

如何有效完成CRISPR實(shí)驗(yàn)!

生物學(xué)家們總是沉迷于對基因組修修補(bǔ)補(bǔ),而其中一種近期紅得發(fā)紫的技術(shù)就是 CRISPR。自2012年CRISPR/Cas 作為一種基因組編輯工具登臺(tái)以來,關(guān)于這種技術(shù)的論文數(shù)量就大幅增加,的證明之一就是2015年兩位科學(xué)家由于在CRISPR基因組編輯技術(shù)方面的重要貢獻(xiàn)而獲得“科學(xué)突破獎(jiǎng)”,其中一位獲獎(jiǎng)?wù)撸篔ennifer Doudna zui近在范德堡大學(xué)進(jìn)行客座演講,主會(huì)場和分會(huì)場都擠滿了人,從中可以窺見這一技術(shù)的火熱程度。

CRISPR全稱為clustered regularly interspersed short palindromic repeats,是源于細(xì)菌及古細(xì)菌中的一種后天免疫系統(tǒng),它可利用靶位點(diǎn)特異性的RNA指導(dǎo)Cas蛋白對靶位點(diǎn)序列進(jìn)行修飾。直到近年,科學(xué)家們才開始利用這一系統(tǒng)在活體動(dòng)物基因組中生成靶向突變,刪除原有的基因或插入新基因。

這一技術(shù)發(fā)展迅速,就在去年,研究人員已經(jīng)發(fā)現(xiàn)了利用CRISPR/Cas 治愈小鼠中一種罕見肝臟疾病的方法,并且科學(xué)家們也發(fā)現(xiàn)可以通過這種方法切除人類免疫細(xì)胞中hiv病毒插入的基因,阻止HIV進(jìn)入血液干細(xì)胞。其原因可能在于這種方法比其它基于核酸酶的編輯方法操作簡便,研究人員跟著指南操作,進(jìn)行一輪PCR就能基本完成CRISPR實(shí)驗(yàn)了。

但CRISPR/Cas系統(tǒng)也存在自身的一些缺陷,比如進(jìn)入細(xì)胞后,有可能在非目標(biāo)位點(diǎn)進(jìn)行酶切,從而導(dǎo)致脫靶,這對于臨床應(yīng)用來說是一大敗筆。

我們需要更加和有效的CRISPR工具,研究人員也正在研究如何避免這類情況的發(fā)生,開發(fā)更好的預(yù)測編輯工具,或者研發(fā)能將CRISPR元件更有效傳遞到細(xì)胞內(nèi)的方式,以下是the scientist雜志匯總的新進(jìn)展。

癌癥研究的啟示

研究者:康奈爾大學(xué)遺傳學(xué)教授John Schimenti

項(xiàng)目:利用 CRISPR/Cas9 研發(fā)癌癥和減數(shù)分裂小鼠模型

CRISPR/Cas9系統(tǒng)是通過在基因組上造成切口來完成編輯工作,這些切口可以通過兩種途徑修復(fù),一種是由非同源性末端接合(Non-homologous end joining, NHEJ) 過程進(jìn)行粘合,這種方法有效但容易出錯(cuò);另外一種方法就是加入包含目標(biāo)突變的DNA人工片段,利用同源指導(dǎo)修復(fù)(homology-directed repair,HDR,編者譯)完成。

Schimenti 說,“問題在于這兩個(gè)過程是競爭完成的。前者NHEJ會(huì)由于實(shí)驗(yàn)小鼠出現(xiàn)非目標(biāo)突變受到干擾,”他們希望能找到一種HDR途徑新方法完成有效,且更的編輯,

為了解決這一問題,研究人員嘗試針對過去的果蠅胚胎基因組編輯實(shí)驗(yàn)改進(jìn) HDR/NHEJ 比例,他們通過遺傳手段抑制了NHEJ途徑中的一個(gè)分子:DNA連接酶IV,碰巧正好有這么一個(gè)小分子抑制劑,SCR7能抑制這種酶的作用(這種小分子在之后的實(shí)驗(yàn)中被證明能作為癌癥治療分子)。

Schimenti研究組在小鼠胚胎中改變了一個(gè)基因的兩個(gè)堿基,結(jié)果證明加入SCR7能將HDR:NHEJ比率從之前的1:10調(diào)整為1:2.5,這一研究成果公布在今年的Genetics雜志上,標(biāo)題為A Mouse Geneticist’s Practical Guide to CRISPR Applications。

如何操作:

只要在Cas9 和合成的DNA 被注入到你的單細(xì)胞受精卵之后,在培養(yǎng)基中添加 SCR7就可以了。一些其他的研究組,如范德堡大學(xué)的Douglas Mortlock也在嘗試進(jìn)行這一實(shí)驗(yàn)。Schimenti實(shí)驗(yàn)室常會(huì)在實(shí)驗(yàn)中加入這種物質(zhì),因?yàn)槟壳翱磥鞸CR7并不會(huì)造成什么傷害,不過“這種小分子確實(shí)會(huì)影響其它基因,所以還是需要進(jìn)行對比實(shí)驗(yàn),”他說。

注意事項(xiàng):

培養(yǎng)基中加入了SCR7(50 μ M)的受精卵生存率更高,但是在two-cell階段,SCR7 會(huì)影響細(xì)胞進(jìn)入囊胚期,其原因尚不清楚。但Schimenti表示這應(yīng)該不成問題,因?yàn)樵谀侵熬涂梢詫⑵滢D(zhuǎn)入到雌性小鼠中了。

成本:從Xcessbio公司可以買到SCR7,價(jià)格為129 美元/2 mg(當(dāng)?shù)貎r(jià)格)。

人體細(xì)胞中的可誘導(dǎo)CRISPR

研究者:紀(jì)念斯隆凱特琳癌癥中心干細(xì)胞生物學(xué)中心的發(fā)育生物學(xué)家Danwei Huangfu

研究項(xiàng)目:利用人類胚胎干細(xì)胞了解胰腺發(fā)育過程中特殊基因的作用和相互影響 CRISPR/Cas工具的一大挑戰(zhàn)就是將這一系統(tǒng)中的元件傳輸?shù)郊?xì)胞內(nèi),通常這是通過電穿孔完成,但是將 CRISPR/Cas系統(tǒng)插入到人類干細(xì)胞中的這一過程,效率非常低,Huangfu表示,要完成一個(gè)單一突變傳送,需 要一個(gè)月的時(shí)間。

Huangfu的項(xiàng)目要求刪除一個(gè)或多個(gè)基因的兩個(gè)拷貝,這也就意味著多輪靶定,她需要一個(gè)效率更高的系統(tǒng)。

要解決這個(gè)問題,zui困難的一步是將大體積的Cas9 基因傳入到細(xì)胞內(nèi),為此Huangfu研究組構(gòu)建了一種已經(jīng)整 合了Cas9元件的細(xì)胞系:首先他們采用了一種相似的技術(shù)TALEN,這種技術(shù)與CRISPR技術(shù)的不同之處在于,前者采用的是DNA結(jié)合位點(diǎn),后者才有的是導(dǎo)向RNAs(An iCRISPR platform for rapid, multiplexable, and inducible genome editing in human pluripotent stem cells)。

“通過TALENs,我們將 Cas9 整合到了人類干細(xì)胞上的一個(gè)非常特殊的位點(diǎn),這一位點(diǎn)不易發(fā)生沉默效應(yīng)。”

研究人員還設(shè)計(jì)了能在藥物多西環(huán)素存在的條件下表達(dá) Cas9 的細(xì)胞。這種方法被稱為iCRISPR,研究人員能 利用iCRISPR在分化過程中不同時(shí)間點(diǎn)里打開基因組編輯。(注意不要將iCRISPR與CRISPRi弄混淆了,后者與RNAi相似,能可逆性的阻止轉(zhuǎn)錄)

iCRISPR技術(shù)能將CRISPR/Cas操作主要步驟縮減成一個(gè):用導(dǎo)向RNA轉(zhuǎn)染細(xì)胞,導(dǎo)向RNA要小得多,也更容易進(jìn) 入細(xì)胞。“我們驚訝的發(fā)現(xiàn)(iCRISPR)作用非常好,”Huangfu說,利用這一技術(shù),她的研究組在一個(gè)月的時(shí) 間里完成了12個(gè)基因的突變。

如何操作:

Huangfu研究組公布了這一技術(shù)的詳細(xì)步驟(The iCRISPR platform for rapid genome editing in human pluripotent stem cells),如果已經(jīng)有了一些人類干細(xì)胞基因靶向的實(shí)驗(yàn)經(jīng)驗(yàn),研究人員可以從Addgene 公 司購買質(zhì)粒,自己構(gòu)建iCas9 表達(dá)的細(xì)胞。如果材料齊全,那么一到兩個(gè)月時(shí)間就能構(gòu)建出 iCas9 細(xì)胞,再用接下來的一兩個(gè)月時(shí)間完成基因組編輯細(xì)胞系。 如果不想從頭制作 iCas9 細(xì)胞,那么可以SKI Stem Cell Research Facility。

注意事項(xiàng):

雖然Huangfu研究組目前還未發(fā)現(xiàn)明顯的脫靶效應(yīng),但是這一研究組采用了兩種措施來避免潛在的脫靶(類似 于RNAi實(shí)驗(yàn)):恢復(fù)實(shí)驗(yàn)(rescue experiments,生物通譯)和用兩個(gè)不同的 CRISPRs 靶向相同基因。

成本:Addgene質(zhì)粒成本為$65(當(dāng)?shù)貎r(jià)格),iCas9 細(xì)胞構(gòu)建需要$600,SKI購買需要400美元。

新傳送方式

研究者:哈佛大學(xué)化學(xué)與化學(xué)生物學(xué)教授David Liu

項(xiàng)目:在小鼠模型中尋找治療遺傳性耳聾的方法

基因組編輯蛋白需要進(jìn)入靶向細(xì)胞核中完成任務(wù),但是 CRISPR/Cas9和其它所有大分子一樣,傳遞是一個(gè)主 要問題。

而且如果 CRISPR/Cas9 系統(tǒng)是作為DNA質(zhì)粒傳遞進(jìn)入的話,Cas9 核酸酶作用會(huì)增強(qiáng),不僅會(huì)切斷靶向基因, 而且還會(huì)影響其周圍的基因,導(dǎo)致脫靶編輯。

為了解決這一問題,Liu等人模擬了科學(xué)家們將DNA和RNA一類的核酸傳送至細(xì)胞中去的方式。這一系統(tǒng)依賴于 稱作為陽離子脂質(zhì)的正電荷分子,其能夠結(jié)合負(fù)電荷核酸形成脂質(zhì)體。脂質(zhì)體一旦形成,其可通過至少兩種方 式將內(nèi)容物傳遞到細(xì)胞中。在某些情況下,脂質(zhì)體有可能與細(xì)胞膜融合釋放它的貨物。此外,脂質(zhì)體還可能與 核內(nèi)體膜融合釋放出內(nèi)容物。

“我們有一個(gè)非常簡單的想法,即將研究人員用來傳送DNA和RNA的商業(yè)化陽離子脂質(zhì)用于傳送蛋白質(zhì)。這次我 們沒有采用超正電荷蛋白,而是利用了超負(fù)電荷蛋白,其類似于核酸處于高度的負(fù)電荷狀態(tài)。利用陽離子脂質(zhì) 來傳送與高度負(fù)電荷分子結(jié)合的蛋白質(zhì),相比于采用正電荷蛋白質(zhì)或肽來傳送蛋白質(zhì)其效力提高了近1000 倍,”Liu說。

zui終實(shí)驗(yàn)證實(shí)了利用這一新系統(tǒng)來傳送基因組編輯蛋白質(zhì),至少與傳送編碼基因組編輯蛋白的DNA所觀察到的 結(jié)果一樣。而且傳送蛋白比傳送DNA的基因組編輯特異性要高得多。

傳送DNA之后,在長時(shí)間內(nèi)難以控制編碼蛋白的表達(dá)量。DNA傳送與期望的基因組編輯結(jié)果之間總是無法一致。在基因組編輯中,其任務(wù)是修復(fù)一個(gè)或兩個(gè)拷貝的基因。而在基因組編輯蛋白完成這一任務(wù)后,你會(huì)想讓它消 失,因?yàn)樵诖酥笏龅木褪遣幌Ml(fā)生并有可能是有害的事情。

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